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Créé le 25 novembre 1998
BRACHYSPIRA ALVINIPULLI
Autre dénomination : Serpulina alvinipulli. Voir aussi le fichier : ¤ Brachyspira.
Systématique
En 1998, Stanton et al. proposent l'appellation de Serpulina alvinipulli pour une souche de spirochètes (la souche 91-1207/C1) isolée en 1991 par Swayne et al. du caecum d'un poulet atteint de diarrhée. Les espèces du genre Serpulina ayant été renommé Brachyspira (voir ¤ Brachyspira), une note placée à la fin de l'article spécifie que cette bactérie doit être désignée par la nomenclature de Brachyspira alvinipulli. L'analyse du polymorphisme électrophorétique d'enzymes métaboliques et l'analyse de la séquence du gène codant pour l'ARNr 16S montrent que la souche 91-1207/C1 est un représentant du genre ¤ Brachyspira et les résultats des hybridations ADN - ADN (pourcentage d'homologie avec les autres espèces du genre de 24 à 39 p. cent) montrent qu'elle constitue une nouvelle espèce.
Caractères bactériologiques
Brachyspira alvinipulli présente les caractères du genre ¤ Brachyspira. C'est une bactérie, anaérobie mais aérotolérante, possédant la morphologie et l'ultra-structure des spirochètes, mesurant de 8 à 11 microns de longueur sur 0,22 à 0,34 microns de diamètre et présentant 22 à 30 flagelles (11 à 15 flagelles attachés à chacune des extrémités de la cellule).
Une réaction positive est obtenue pour les tests hydrolyse de l'hippurate, bêta-glucosidase, bêta-galactosidase, phosphatase alcaline, hydrolyse de l'acétate d'indoxyle, arginine aminopeptidase, alanine aminopeptidase et glycine aminopeptidase.
La croissance optimale est obtenue dans une atmosphère contenant 1 p. cent d'oxygène et 99 p. cent d'azote et pour une température d'incubation comprise entre 39 °C et 42 °C (aucune croissance n'est notée pour des températures de 32 ou de 47 °C). En bouillon cœur - cervelle enrichi de 10 p. cent de sérum de veau fœtal, le temps nécessaire au doublement de la population varie de 2 à 4 heures. Sur gélose trypticase soja au sang de mouton, les colonies sont faiblement hémolytiques.
Habitat et pouvoir pathogène
Des spirochètes dont la forme, la taille et la mobilité évoquent des Brachyspira sp. ont été mis en évidence dans l'intestin des volailles dès 1910 au Royaume Uni. Ces bactéries n'ont pas suscité un grand intérêt jusqu'à ce que Davelaar et al. (1986) décrivent chez les poulets, un syndrome entéritique associé à la présence des spirochètes et appelé "spirochétose intestinale aviaire". Actuellement, des spirochètes intestinaux ont été retrouvés chez le poulet de chair, les reproducteurs, la poule pondeuse, le dindon et chez plusieurs espèces d'oiseaux appartenant aux ordres des Ansériformes, des Ciconiiformes et des Rhéiformes. Les spirochètes intestinaux des volailles appartiennent à plusieurs espèces (¤ Brachyspira hyodysenteriae, ¤ Brachyspira innocens, ¤ Brachyspira pilosicoli, ¤ "Brachyspira pulli", Brachyspira sp., ¤ Brachyspira intermedia et ¤ Brachyspira murdochii). Brachyspira alvinipulli a été la première espèce, primitivement isolée des oiseaux, à être caractérisée et nommée.
Chez les oiseaux, la colonisation des caecums et du rectum par des spirochètes faiblement hémolytiques a été associée à de la diarrhée, à des retards de croissance, à une diminution de la ponte et à la ponte d'œufs souillés par des fèces. Tous ces spirochètes faiblement hémolytiques n'appartiennent pas à l'espèce Brachyspira alvinipulli et il est actuellement difficile d'avoir une idée précise de l'épidémiologie et du pouvoir pathogène de cette bactérie. Les travaux effectués avec la souche 91-1207/C1 montrent que, dans les conditions naturelles et expérimentales, Brachyspira alvinipulli est un des agents de la "spirochétose intestinale aviaire " même si cette espèce se révèle peu pathogène. Brachyspira alvinipulli est capable de coloniser les caecums de poulets de 1 jour ou de poules âgées de 14 mois et de provoquer une diarrhée modérée accompagnée de la présence de lésions de typhlite et de proctite.
Une souche de Brachyspira alvinipulli a été isolée d'un chien cliniquement sain élevé en plein-air. Aucune donnée n'est disponible en ce qui concerne (i) l'origine de la contamination et (ii) une éventuelle contamination des oiseaux par le chien.
Diagnostic bactériologique
Un examen au microscope à fond noir ou au contraste de phase des fèces ou d'un raclage de muqueuse caecale permet la mise en évidence de spirochètes mais ne permet pas de savoir s'ils sont pathogènes et à plus forte raison, s'ils appartiennent à l'espèce Brachyspira alvinipulli. D'une manière générale, pour l'isolement des spirochètes intestinaux des volailles, on préconise l'utilisation d'une gélose trypticase soja enrichie de 5 p. cent de sang de mouton défibriné, incubée en anaérobiose (méthode GasPak) et à une température de 38 °C. Dans le cas particulier de Brachyspira alvinipulli, on peut utiliser une atmosphère contenant 1 p. cent d'oxygène et 99 p. cent d'azote et une température d'incubation comprise entre 39 °C et 42 °C. Le milieu peut être rendu sélectif par l'adjonction de 400 mg/mL de spectinomycine ou par l'adjonction de 25 mg/mL de colistine et de 25 mg/mL de vancomycine. Le milieu BJ (voir ¤ Brachyspira hyodysenteriae) est déconseillé car il inhibe la croissance de certains spirochètes intestinaux d'origine aviaire. L'identification repose sur la morphologie, l'hémolyse faible, l'hydrolyse de l'hippurate et la non production d'indole. Ces caractères ne permettent pas de différencier Brachyspira alvinipulli de Brachyspira pilosicoli et il conviendra de caractériser les activités enzymatiques au moyen d'une galerie API ZYM (voir tableau I). Selon Johansson et al., les espèces du genre Brachyspira, isolées chez le chien, peuvent être identifiées selon les résultats des tests hippurate et alpha-galactosidase (voir le tableau ci-dessous).
Abe et Adachi suggèrent qu'un antigène protéique de 105 kDa pourrait être utilisé pour un éventuel diagnostic sérologique.
Orientation bibliographique
ABE (Y.) et ADACHI (Y.) : A possibility of application of the 105-kilodaltons protein of Brachyspira alvinipulli cross-reacting with antisera to five species in the genus Brachyspira to diagnosis. J. Vet. Med. Sci., 2004, 66, 773-778. DAVELAAR (F.G.), SMIT (H.F.), HOVIND-HOUGEN (K.), DWARS (R.M.), et VAN DER VALK (P.C.) : Infectious typhlitis in chickens caused by spirochetes. Avian Pathol., 1986, 15, 247-258. JOHANSSON (K.E.), DUHAMEL (G.E.), BERGSJO (B.), ENGVALL (E.O.), PERSSON (M.), PETTERSSON (B.) et FELLSTROM (C.) : Identification of three clusters of canine intestinal spirochaetes by biochemical and 16S rDNA sequence analysis. J. Med. Microbiol., 2004, 53, 345-350. HAMPSON (D.J.), STEPHENS (C.P.), PHILLIPS (N.D.), LA (T.) et PLUSKE (J.R.) : Control of intestinal spirochaete infections in chickens (54 pages). A report for the Rural Industries Research and Development Corporation (Australian Government). December 2004. RIRDC Publication No 04/141. RIRDC Project No UMU-29J. http://www.rirdc.gov.au/reports/CME/04-141.pdf SMIT (H.F.), DWARS (R.M.), DAVELAAR (F.G.) et WIJTTEN (G.A.W.) : Observations on the influence of intestinal spirochaetosis in broiler breeders on the performance of their progeny and on egg production. Avian Pathol., 1998, 27, 133-141. STANTON (T.B.), POSTIC (D.) and JENSEN (N.S.): Serpulina alvinipulli sp. nov., a new Serpulina species that is enteropathogenic for chickens. Int. J. Syst. Bacteriol., 1998, 48, 669-676. SWAYNE (D.E.) : Avian intestinal spirochetosis. In Y.M. SAIF : Diseases of polutry, 11th edition, 2003, pp. 826-836. SWAYNE (D.E.), EATON (K.A.), STOUTENBURG (J.), TROTT (D.J.), HAMPSON (D.J.) et JENSEN (N.S.) : Identification of a new intestinal spirochete with pathogenicity for chickens. Infect. Immun. 1995, 63, 430-436. SWAYNE (D.E.) et McLAREN : Avian intestinal spirochaetes and avian intestinal spirochaetosis. In : D.J. Hampson et T.B. Stanton (éd.) : Intestinal spirochaetes in domestic animals and humans. CAB International, Oxon, 1997, pp. 267-300.
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