J.P. Euzéby : Dictionnaire de Bactériologie Vétérinaire |
Dernière mise à jour le 02 décembre 1999
BORDETELLA HINZII
Autres dénominations :
"Bordetella avium-like", "Alcaligenes faecalis type II", "souches TC (turkey coryza) type II".
Voir aussi les fichiers : ¤ Alcaligenaceae et ¤ Burkholderiales, Burkholderiaceae.
Systématique
Bordetella hinzii est la nomenclature validement publiée en 1995 par Vandamme et al. pour deux souches bactériennes d’origine humaine et pour douze souches d’origine aviaire qualifiées de "Bordetella avium-like", de "Alcaligenes faecalis type II" ou de "souches TC (turkey coryza) type II". L’individualisation de cette nouvelle espèce repose sur les résultats d'hybridations ADN - ADN et d'hybridations ADN - ARNr, sur la détermination du G + C p. cent, sur l’analyse électrophorétique des protéines, sur la composition en acide gras et sur l’étude de caractères phénotypiques classiques. Les hybridations ADN - ARNr montrent que Bordetella hinzii est phylogénétiquement plus proche de Bordetella bronchiseptica, de Bordetella pertussis et de Bordetella parapertussis que de ¤ Bordetella avium. Toutefois, les caractères phénotypiques de Bordetella hinzii et de ¤ Bordetella avium sont voisins ce qui pose des problèmes pour le diagnostic différentiel (Cf. infra).
Caractères bactériologiques
La description de Bordetella hinzii est la suivante :
Bacille à Gram négatif, non sporulé, mobile grâce à une ciliature péritriche, aérobie strict, à métabolisme respiratoire, oxydase et catalase positives, ne réduisant pas les nitrates et n’acidifiant pas les sucres.
Une réponse positive est observée pour les tests assimilation de l'esculine et alcalinisation* de l’acétamide, de l’adipate, de la malonamide, du malonate, du valérate ou de la propionamide. L'alcalinisation de la glycine ainsi que l'hydrolyse de l'urée sur le milieu de Christensen sont variables selon les souches.
En galerie API 20NE, Bordetella hinzii assimile l'adipate, le malate, le citrate et le phényl-acétate. Une réponse négative est notée pour les tests production d'indole, uréase, ADH, bêta-galactosidase, gélatinase, hydrolyse de l'esculine, assimilation du D-glucose, du L-arabinose, du D-mannose, du D-mannitol, de la N-acétylglucosamine, du maltose et du D-gluconate. L'assimilation du caprate est variable selon les souches (12 souches sur les 14 testées donnent une réponse positive). Les profils numériques obtenus sont donc 0 0 0 0 0 7 7 ou 0 0 0 0 0 6 7. Ce dernier profil peut également être obtenu avec des souches de ¤ Bordetella avium.
En galerie API ZYM, la souche type de Bordetella hinzii donne une réponse positive aux tests phosphatase alcaline, estérase lipase C8 (réponse faiblement positive), naphtol-AS-BI-phosphohydrolase (réponse faiblement positive) et valine arylamidase (réponse faiblement positive).
La croissance, obtenue pour des températures de 25 °C, 37 °C et 42 °C, est observée sur gélose trypticase soja, gélose de MacConkey, gélose au citrate de Simmons, gélose au cétrimide** et en présence de 6,5 p. cent de NaCl.
Sur gélose trypticase soja, incubée 48 heures dans une atmosphère contenant 5 p. cent de CO2, deux types de colonies sont observés. Certaines souches donnent des colonies rondes, bombées, brillantes, grisâtres et d’un diamètre de 2 mm alors que d’autres souches donnent des colonies plates, sèches, ridées et d’un diamètre de 5 mm.
Quelques caractères permettant de différencier Bordetella hinzii des autres espèces du genre Bordetella figurent dans le tableau I.
Habitat et pouvoir pathogène
Les souches d’origine humaine ont été isolées de l'appareil respiratoire (outre la souche étudiée en 1995 par Vandamme et al., au moins trois autres souches ont été caractérisées dans le tractus respiratoire de l'homme) et d’un cas de septicémie chez un individu infecté par le virus HIV.
Les souches aviaires ont pour origine les voies respiratoires du dindon et du poulet mais, contrairement à ¤ Bordetella avium, elles semblent dépourvues de pouvoir pathogène naturel ou expérimental.
Diagnostic bactériologique
Comme c'est le cas pour de nombreuses bactéries n'acidifiant pas les sucres, le diagnostic bactériologique de Bordetella hinzii est délicat. Elle se distingue facilement de Bordetella bronchiseptica par son caractère uréase négatif en galerie API 20NE et par l'absence de nitrate réductase mais, il est difficile de la différencier de Alcaligenes faecalis et de ¤ Bordetella avium.
Alcaligenes faecalis n'est pas ou rarement isolé de l'appareil respiratoire des oiseaux et quelques caractères utiles au diagnostic différentiel figurent sur le tableau II.
La distinction entre Bordetella hinzii et ¤ Bordetella avium est importante en pratique. En effet, cette dernière espèce a pour habitat l'appareil respiratoire des oiseaux et elle est responsable d’infections respiratoires dans les élevages de dindes et, plus rarement, dans d'autres élevages aviaires (poulets, canards, oies...). Outre les caractères figurant dans le tableau II, on peut noter que, contrairement à ¤ Bordetella avium, Bordetella hinzii n'agglutine pas les globules rouges (globules rouges de poulets, de dindes, de cobayes ou d'hommes), qu'elle cultive sur le milieu au citrate de Simmons ou en présence de 6,5 p. cent de NaCl ou en présence de cétrimide et qu'elle est résistante ou de sensibilité intermédiaire à l’ampicilline (diamètres des zones d’inhibition obtenus avec un disque chargé à 10 mg inférieur ou égal à 13 mm. L’utilisation d’anticorps monoclonaux permet également de distinguer ces deux espèces soit par un test d'agglutination passive inversée (une colonie à examiner est mise en suspension dans 50 µL de PBS puis mélangée à 50 µL d'une suspension de billes de latex revêtues d'anticorps monoclonaux) soit par un test d'immunofluorescence indirecte réalisé directement sur un prélèvement.
Orientation bibliographique
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* : Recherche de l'alcalinisation des amides et d'autres substrats organiques
La recherche de l'alcalinisation doit être effectuée à l'aide d'un milieu de Greenwood faiblement peptoné :
(NH4)2HPO4 : 0,1 g
KCl : 0,02 g
MgSO4, 7H2O : 0,2 g
Extraits de levure : 0,05 g
Casitone : 0,05 g
Glucose : 0,02 g
Agar : 1,5 g
Solution aqueuse à 0,4 p. cent de bleu de bromothymol : 2,5 mL
Eau distillée : 100 mL
pH : 6,5
Après autoclavage, les différents substrats sont stérilisés par filtration et ajoutés au milieu de base à la concentration de 1 p. cent.
Le milieu est coulé dans des tubes de 110 X 13 mm, bouchés par du coton cardé, à raison de 3 mL par tube. Les tubes sont inclinés de façon à obtenir une pente. La pente est ensemencée à l'aide d'un inoculum lourd d'une culture de 16 heures. L'apparition d'une couleur bleue foncée indique un résultat positif.
L'utilisation d'un autre milieu (tel que le milieu OAL de Otto et Pickett) ou le fait de boucher les tubes hermétiquement modifient les résultats.
Gélose nutritive : 40,0 g
Cétrimide : 0,9 g
Eau distillée : 1 L
pH : 7,2