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Dernière mise à jour le 03 mars 2010
BARTONELLA TRIBOCORUM
Voir aussi le fichier ¤ Bartonella.
Systématique
Chronologiquement, Bartonella tribocorum est la douzième espèce décrite au sein du genre Bartonella (voir : ¤). Cette nomenclature a été proposée en 1998 pour deux souches de Bartonella sp. isolées du sang de rats sauvages (Rattus norvegicus) vivant dans l'Est de la France.
Cette bactérie est présente dans les érythrocytes et elle possède les caractères phénotypiques du genre Bartonella.
Caractères bactériologiques
Bartonella tribocorum est un bacille à Gram négatif, de 0,5 mm de diamètre sur 1 à 2 mm de longueur, dépourvu de flagelle, aérobie, oxydase et catalase négatives.
Les caractères biochimiques ont été étudiés à l'aide de tablettes Rosco Diagnostica (VP, hydrolyse de la tributyrine, pyrazinamidase, activité peptidasique vis-à-vis de la proline-bêta-naphtylamide et de la benzoyl-arginine-bêta-naphtylamide [activité trypsine-like]) ou à l'aide du kit MicroScan® Rapid Anaerobe Panel*** (Baxter Diagnostics).
Comme pour les autres bartonelles, la culture de Bartonella tribocorum est longue et difficile. A l'isolement, les colonies ne sont obtenues qu'après 10 jours d'incubation et, lors d'un repiquage, les colonies apparaissent en 5 jours. Sur une gélose Columbia enrichie de 5 p. cent de sang de lapin défibriné, incubée à 35 °C en atmosphère humide et en présence de 5 p. cent de CO2, les colonies sont rugueuses, enchâssées dans la gélose, compactes, difficiles à mettre en suspension et leur diamètre est inférieur à 1 mm.
Habitat et pouvoir pathogène
Les deux souches de Bartonella tribocorum ont été isolées de deux rats, capturés sur les bords du Rhin à l'aide d'un piège et retrouvés noyés au moment des analyses.
Ultérieurement, des souches de Bartonella tribocorum ont été isolées de muridés (Apodemus flavicollis, Apodemus speciosus), de rats (Rattus norvegicus, Rattus rattus), de puces et de poux capturés dans différentes régions du monde. Toutefois, aucune souche n'a été isolée de l'homme et le pouvoir pathogène de Bartonella tribocorum n'est toujours pas documenté.
Orientation bibliographique
Voir aussi le fichier ¤ Bartonella. BAI (Y.), MONTGOMERY (S.P.), SHEFF (K.W.), CHOWDHURY (M.A.), BREIMAN (R.F.), KABEYA (H.) et KOSOY (M.Y.) : Bartonella strains in small mammals from Dhaka, Bangladesh, related to Bartonella in America and Europe. Am. J. Trop. Med. Hyg., 2007, 77, 567-570. BIRTLES (R.J.) et RAOULT (D.) : Comparison of partial citrate synthase gene (gltA) sequences for phylogenetic analysis of Bartonella species. Int. J. Syst. Bacteriol., 1996, 46, 891-897. HELLER (R.), KUBINA (M.), MARIET (P.), RIEGEL (P.), DELACOUR (G.), DEHIO (C.), LAMARQUE (F.), KASTEN (R.), BOULOUIS (H.J.), MONTEIL (H.), CHOMEL (B.) et PIÉMONT (Y.) : Bartonella alsatica sp. nov., a new Bartonella species isolated from the blood of wild rabbits. Int. J. Syst. Bacteriol., 1999, 49, 283-288. HELLER (R.), RIEGEL (P.), HANSMANN (Y.), DELACOUR (G.), BERMOND (D.), DEHIO (C.), LAMARQUE (F.), MONTEIL (H.), CHOMEL (B.) et PIÉMONT (Y.) : Bartonella tribocorum sp. nov., a new Bartonella species isolated from the blood of wild rats. Int. J. Syst. Bacteriol., 1998, 48, 1333-1339. INOUE (K.), MARUYAMA (S.), KABEYA (H.), YAMADA (N.), OHASHI (N.), SATO (Y.), YUKAWA (M.), MASUZAWA (T.), KAWAMORI (F.), KADOSAKA (T.), TAKADA (N.), FUJITA (H.) et KAWABATA (H.) : Prevalence and genetic diversity of Bartonella species isolated from wild rodents in Japan. Appl. Environ. Microbiol., 2008, 74, 5086-5092. LIN (J.W.), CHEN (C.Y.), CHEN (W.C.), CHOMEL (B.B.) et CHANG (C.C.) : Isolation of Bartonella species from rodents in Taiwan including a strain closely related to 'Bartonella rochalimae' from Rattus norvegicus. J. Med. Microbiol., 2008, 57, 1496-1501. MORICK (D.), BANETH (G.), AVIDOR (B.), KOSOY (M.Y.), MUMCUOGLU (K.Y.), MINTZ (D.), EYAL (O.), GOETHE (R.), MIETZE (A.), SHPIGEL (N.) et HARRUS (S.) : Detection of Bartonella spp. in wild rodents in Israel using HRM real-time PCR. Vet. Microbiol., 2009, 139, 293-297.
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* : Bartonella bacilliformis, Bartonella clarridgeiae, Bartonella doshiae, Bartonella elizabethae, Bartonella grahamii, Bartonella henselae, Bartonella quintana, Bartonella taylorii, Bartonella vinsonii subsp. berkhoffii et Bartonella vinsonii subsp. vinsonii.
** : Bartonella doshiae, Bartonella elizabethae, Bartonella grahamii, Bartonella henselae, Bartonella quintana, Bartonella taylorii et Bartonella vinsonii subsp. vinsonii.
*** : Galerie MicroScan® Rapid Anaerobe Panel
La galerie MicroScan® Rapid Anaerobe Panel a été conçue pour l'identification des bactéries anaérobies mais elle est fréquemment utilisée pour les espèces du genre Bartonella. La galerie comprend 24 substrats déshydratés et elle est inoculée (50 µL par puits) avec une suspension bactérienne dont l'opacité est comprise entre les valeurs 3 et 5 de l'échelle de McFarland. Les tests détectent des enzymes préformées et la croissance du germe n'est pas nécessaire si bien que la galerie est incubée sous une atmosphère normale durant 4 heures à 35 - 37 °C. Après incubation, la lecture repose sur les changements de pH et l'apparition de colorations après adjonction éventuelle de réactifs. Deux cupules de contrôle sont prévues pour faciliter la lecture. Un contrôle au nitrophényl qui doit rester incolore et un contrôle au bêta-naphthylamide qui doit virer au jaune-orange après addition du réactif "peptidase". La liste des 24 substrats ainsi que le principe de la lecture sont donnés dans le tableau ci-dessous :
* : Les substrats d'ortho- ou de para-nitrophényl sont incolores. L'enzyme, lorsqu'elle est présente, hydrolyse le substrat et libère de l'ortho- ou du para-nitrophénol de couleur jaune. ** : Lorsque le substrat est hydrolysé par l'arylamidase appropriée, le bêta-naphthylamide est libéré et détecté par l'addition du réactif "peptidase" qui crée un complexe chimique de coloration rose à pourpre magenta. La recherche de la catalase peut s'effectuer dans la cupule p-nitrophényl-bêta-D-galactopyranoside. En cas de réaction positive, l'adjonction de deux à trois gouttes d'eau oxygénée à 3 p. cent provoque l'apparition de bulles après 2 à 3 minutes. Les tests sont séparés par groupe de trois et une valeur 4, 2 ou 1 est attribuée à chaque test. La valeur 4 est attribuée à une réponse positive notée pour le premier test d'un groupe de trois. La valeur 2 est attribuée à une réponse positive notée pour le deuxième test d'un groupe de trois. La valeur 1 est attribuée à une réponse positive notée pour le troisième test d'un groupe de trois. L'addition des valeurs pour chacun des groupes permet d'obtenir un profil numérique à huit chiffres.
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