J.P. Euzéby : Dictionnaire de Bactériologie Vétérinaire |
Crée le 23 novembre 2004
Dernière mise à jour le 26 février 2010
CAMPYLOBACTER INSULAENIGRAE
Voir aussi : ¤ Campylobacter.
Systématique
Quatre souches bactériennes, semblables à des Campylobacter sp. ont été isolées de l'intestin de phoques (Phoca vitulina ou phoque veau marin) et d'un marsouin (Phocoena phocoena).
L'étude des ARNr 16S confirme l'appartenance des quatre souches au genre Campylobacter et elle montre qu'elles sont génétiquement apparentées. Les espèces phylogénétiquement les plus proches sont Campylobacter jejuni subsp. jejuni, Campylobacter jejuni subsp. doylei, Campylobacter lari et Campylobacter coli.
Les hybridations ADN-ADN, réalisées sur les quatre souches, mettent en évidence des pourcentages d'homologie égaux ou supérieurs à 90. En revanche, les pourcentages d'homologie obtenus entre l'ADN de la souche NCTC 12927 et l'ADN des souches types Campylobacter jejuni, de Campylobacter lari et de Campylobacter coli ne dépassent pas 61. Les quatre souches isolées de mammifères marins constituent donc une genomospecies distincte (voir le fichier ¤ "Définitions d'une genomospecies et d'une espèce bactérienne").
Cette genomospecies peut être caractérisée par ses caractères phénotypiques si bien que, le 15 novembre 2004, Foster et al. valident la nomenclature de Campylobacter insulaenigrae (souche type CCUG 48653 = NCTC 12927).
Caractères bactériologiques
Campylobacter insulaenigrae présente les caractères généraux de la famille des ¤ Campylobacteraceae et du genre ¤ Campylobacter.
Les souches de cette espèce se présentent sous la forme de bacilles à Gram négatif, incurvés, mobiles, non sporulés, non capsulés, microaérophiles, incapables d’utiliser les sucres, catalase positive, oxydase positive, réduisant les nitrates en nitrites, résistants à 30 µg/mL de céfalotine et résistants à 30 µg/mL d'acide nalidixique.
. Une réponse positive est obtenue pour le test croissance en présence de 1 p. cent de glycine.
. Une réponse négative est notée pour les tests croissance à 25 ou à 42 °C, croissance en présence de 2 ou de 3,5 p. cent de NaCl, croissance en aérobiose, croissance en anaérobiose, production d'hydrogène sulfuré* en milieu TSI (Triple Sugar Iron), uréase, hydrolyse de l'hippurate et indoxyl acétate estérase.
. Quelques caractères permettant de différencier Campylobacter insulaenigrae des autres espèces du genre Campylobacter sont donnés dans le tableau I.
Après 48 heures d'incubation à 37 °C dans une atmosphère microaérophile, les colonies obtenues sur une gélose Columbia enrichie de 5 p. cent de sang de mouton sont circulaires, à contour régulier, légèrement convexes, lisses, brillantes, grises, de consistance butyreuse et leur diamètre est compris entre 0,75 et 1 mm.
L'identification du germe par l'étude des caractères phénotypiques est difficile et peut conduire à identifier les souches de Campylobacter insulaenigrae comme appartenant à l'espèce Campylobacter lari. Le recours à des techniques de biologie moléculaire (séquençage de l'ARNr 16S et/ou PCR) semble indispensable pour une identification correcte.
Habitat et pouvoir pathogène
Trois souches de Campylobacter insulaenigrae ont été isolées d'écouvillonnages rectaux effectués chez trois phoques capturés en Mer du Nord et une souche a été isolée du contenu intestinal d'un marsouin retrouvé mort.
Foster et al. ne donnent aucune indication sur l'état de santé des phoques ni sur les éventuelles lésions observées lors de l'autopsie du marsouin.
Ultérieurement, 71 souches de Campylobacter insulaenigrae ont été isolées, en Californie, des fèces d'éléphants de mer (Mirounga angustirostris) et une souche a été isolée chez une femme de 69 ans présentant des troubles hépatiques et rénaux.
Le pouvoir pathogène de cette espèce pour l'homme ou les mammifères marins est incertain.
Diagnostic bactériologique
Les quatre souches ont été isolées sur des géloses Columbia enrichies de 5 p. cent de sang de mouton et rendues sélectives grâce au supplément de Blaser-Wang**. Les boîtes avaient été incubées à 37 °C dans une atmosphère contenant 84 p. cent d'azote, 10 p. cent de dioxyde de carbone et 6 p. cent d'oxygène.
Orientation bibliographique
Voir aussi le fichier ¤ Campylobacter.
CHUA (K.), GÜRTLER (V.), MONTGOMERY (J.), FRAENKEL (M.), MAYALL (B.C.) et GRAYSON (M.L.) : Campylobacter insulaenigrae causing septicaemia and enteritis. J. Med. Microbiol., 2007, 56, 1565-1567.
FOSTER (G.), HOLMES (B.), STEIGERWALT (A.G.), LAWSON (P.A.), THORNE (P.), BYRER (D.E.), ROSS (H.M.), XERRY (J.), THOMPSON (P.M.) et COLLINS (M.D.) : Campylobacter insulaenigrae sp. nov., isolated from marine mammals. Int. J. Syst. Evol. Microbiol., 2004, 54, 2369-2373.
STODDARD (R.A.), MILLER (W.G.), FOLEY (J.E.), LAWRENCE (J.), GULLAND (F.M.), CONRAD (P.A.) et BYRNE (B.A.) : Campylobacter insulaenigrae isolates from northern elephant seals (Mirounga angustirostris) in California. Appl. Environ. Microbiol., 2007, 73, 1729-1735.
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* : Production d'hydrogène sulfuré
Dans la publication décrivant ce taxon, la production d'hydrogène sulfuré est notée positive (page 2370, colonne 2 et page 2372 colonne 1) et comme négative dans le tableau 2. En fait Campylobacter insulaenigrae ne produit pas d'hydrogène sulfuré (G. Foster, communication personnelle en date du 16 décembre 2004).
** Supplément sélectif de Blaser-Wang
Céfalotine : 15 mg/L
Vancomycine : 10 mg/L
Triméthoprime : 5 mg/L
Amphotéricine B : 2 mg/L
Polymyxine B 2500 UI/L