J.P. Euzéby : Dictionnaire de Bactériologie Vétérinaire

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Créé le 26 février 2010
Dernière mise à jour le 31 mai 2010

 

Caractères bactériologiques permettant de différencier les espèces du genre Campylobacter

 

D'après :

. DEBRUYNE (L.), BROMAN (T.), BERGSTRÖM (S.), OLSEN (B.), ON (S.L.W.) et VANDAMME (P.) : Campylobacter subantarcticus sp. nov., isolated from birds in the sub-Antarctic region. Int. J. Syst. Evol. Microbiol., 2010, 60, 815-819.
. DEBRUYNE (L.), ON (S.L.W.), DE BRANDT (E.) et VANDAMME (P.) : Novel Campylobacter lari-like bacteria from humans and molluscs: description of Campylobacter peloridis sp. nov., Campylobacter lari subsp. concheus subsp. nov. and Campylobacter lari subsp. lari subsp. nov. Int. J. Syst. Evol. Microbiol., 2009, 59, 1126-1132.
. ROSSI (M.), DEBRUYNE (L.), ZANONI (R.G.), MANFREDA (G.), REVEZ (J.) et VANDAMME (P.) : Campylobacter avium sp. nov., a hippurate-positive species isolated from poultry. Int. J. Syst. Evol. Microbiol., 2009, 59, 2364-2369.
. ZANONI (R.G.), DEBRUYNE (L.), ROSSI (M.), REVEZ (J.) et VANDAMME (P.) : Campylobacter cuniculorum sp. nov., from rabbits. Int. J. Syst. Evol. Microbiol., 2009, 59, 1666-1671.

 

1) C. avium ; 2) C. canadensis ; 3) C. coli ; 4) C. concisus ; 5) C. cuniculorum ; 6) C. curvus ; 7) C. fetus subsp. fetus ; 8) C. fetus subsp. venerealis ; 9) C. gracilis ; 10) C. helveticus ; 11) C. hominis ; 12) C. hyointestilis subsp. hyointestilis ; 13) C. hyointestilis subsp. lawsonii ; 14) C. insulaenigrae ; 15) C. jejuni subsp. doylei ; 16) C. jejuni subsp. jejuni ; 17) C. lanienae ; 18) C. lari* ; 19) C. mucosalis ; 20) C. peloridis ; 21) C. rectus ; 22) C. showae ; 23) C. sputorum ; 24) C. subantarcticus25) C. upsaliensis.

 

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Mobilité

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Hémolyse alpha

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Oxydase

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Catalase

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Phosphatase alcaline

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Uréase

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Hydrolyse de l'hippurate

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Gamma-glutamyltranspeptidase

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Hydrolyse de
l'indoxyl acétate

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Réduction des nitrates

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Réduction du sélénite

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Réduction du TTC

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Production d'H2S (TSI)

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37 °C (microaérophilie)**

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42 °C (microaérophilie)**

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37 °C (aérobiose)**

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CCDA**

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Gélose de MacConkey**

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Bile (1 p. cent )**

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Glycine (1 p. cent )**

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NaCl (2 p. cent)**

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Safranine
(0,05 p. cent)**

 

 

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Exigence en hydrogène

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Acide nalidixique
(32 mg/L)***

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Carbénicilline
(32 mg/L)***

 

 

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Céphalotine (32 mg/L)***

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1) C. avium ; 2) C. canadensis ; 3) C. coli ; 4) C. concisus ; 5) C. cuniculorum ; 6) C. curvus ; 7) C. fetus subsp. fetus ; 8) C. fetus subsp. venerealis ; 9) C. gracilis ; 10) C. helveticus ; 11) C. hominis ; 12) C. hyointestilis subsp. hyointestilis ; 13) C. hyointestilis subsp. lawsonii ; 14) C. insulaenigrae ; 15) C. jejuni subsp. doylei ; 16) C. jejuni subsp. jejuni ; 17) C. lanienae ; 18) C. lari* ; 19) C. mucosalis ; 20) C. peloridis ; 21) C. rectus ; 22) C. showae ; 23) C. sputorum ; 24) C. subantarcticus25) C. upsaliensis.

* : Les deux sous-espèces de Campylobacter lari se différencient par leur capacité à croître en présence de 0,05 p. cent de safranine. La réponse est postive pour Campylobacter lari subsp. lari et négative pour Campylobacter lari subsp. concheus.

** : Croissance.

*** : Résistance.

+ : 90 à 100 p. cent des souches donnent une réponse positive.
- :  0 à 10 p. cent des souches donnent une réponse positive.
(+) :  75 à 89 p. cent des souches donnent une réponse positive.
(-) : 11 à 25  p. cent des souches donnent une réponse positive.
d : 26 à 74 p. cent des souches donnent une réponse positive.
f : Réponse faiblement positive.

CCDA : Charcoal cefoperazone deoxycholate agar (Oxoid).
TTC : chlorure de triphényltétrazolium.

 

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