J.P. Euzéby : Dictionnaire de Bactériologie Vétérinaire

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Dernière mise à jour le 06 décembre 2007

 

Caractères d'identification des espèces du genre Enterococcus


D'après :
. DE GRAEF (E.M.), DEVRIESE (L.A.), VANCANNEYT (M.), BAELE (M.), COLLINS (M.D.), LEFEBVRE (K.), SWINGS (J.) aetnd HAESEBROUCK (F.) : Description of Enterococcus canis sp. nov. from dogs and reclassification of Enterococcus porcinus Teixeira et al. 2001 as a junior synonym of Enterococcus villorum Vancanneyt et al. 2001. Int. J. Syst. Evol. Microbiol., 2003, 53, 1069-1074.
. DEVRIESE (L.A.), CEYSSENS (K.) et HAESEBROUCK (F.) : Characteristics of Enterococcus cecorum strains from the intestines of different animal species. Lett. Appl. Microbiol., 1991, 12, 137-139.
. DEVRIESE (L.A.), POT (B.), KERSTERS (K.), LAUWERS (S.) et HAESEBROUCK (F.) : Acidification of methyl-alpha-D-glucopyranoside: a useful test to differentiate Enterococcus casseliflavus and Enterococcus gallinarum from Enterococcus faecium species group and from Enterococcus faecalis. J. Clin. Microbiol., 1996, 34, 2607-2608.
. FACKLAM et SAHM (D.F.) : Enterococcus. In : P.R. MURRAY, E.J. BARON, M.A. PFALLER, F.C. TENOVER et R.H. YOLKEN : Manual of Clinical Microbiology, 6th ed, American Society for Microbiology, Washington DC, 1995, pp. 308-314.
. KOORT (J.), COENYE (T.), VANDAMME (P.), SUKURA (A.) et BJÖRKROTH (J.) : Enterococcus hermanniensis sp. nov., from modified-atmosphere-packaged broiler meat and canine tonsils. Int. J. Syst. Evol. Microbiol., 2004, 54, 1823-1827.
. LAW-BROWN (J.) et MEYERS (P.R.) : Enterococcus phoeniculicola sp. nov., a novel member of the enterococci isolated from the uropygial gland of the Red-billed Woodhoopoe, Phoeniculus purpureus. Int. J. Syst. Evol. Microbiol., 2003, 53, 683-685.
. NASER (S.M.), VANCANNEYT (M.), DE GRAEF (E.), DEVRIESE (L.A.), SNAUWAERT (C.), LEFEBVRE (K.), HOSTE (B.), SVEC (P.), DECOSTERE (A.), HAESEBROUCK (F.) et SWINGS (J.) : Enterococcus canintestini sp. nov., from faecal samples of healthy dogs. Int. J. Syst. Evol. Microbiol., 2005, 55, 2005, 2177-2182.
. SCHLEGEL (L.) et BOUVET (A.) : Streptocoques et genres apparentés : abiotrophes et entérocoques. Bull. Soc. Fr. Microbiol., 1998, 13 HS, 7-17.
. SUKONTASING (S.), TANASUPAWAT (S.), MOONMANGMEE (S.), LEE (J.S.) et SUZUKI (K.) : Enterococcus camelliae sp. nov., isolated from fermented tea leaves in Thailand. Int. J. Syst. Evol. Microbiol., 2007, 57, 2151-2154.
. SVEC (P.), DEVRIESE (L.A.), SEDLÁCEK (I.), BAELE (M.), VANCANNEYT (M.), HAESEBROUCK (F.), SWINGS (J.) et DOSKAR (J.) : Enterococcus haemoperoxidus sp. nov. and Enterococcus moraviensis sp. nov., isolated from water. Int. J. Syst. Evol. Microbiol., 2001, 51, 1567-1574.
. SVEC (P.), VANCANNEYT (M.), KOORT (J.), NASER (S.M.), HOSTE (B.), VIHAVAINEN (E.), VANDAMME (P.), SWINGS (J.) et BJÖRKROTH (J.) : Enterococcus devriesei sp. nov., associated with animal sources. Int. J. Syst. Evol. Microbiol., 2005, 55, 2479-2484.
. TEIXEIRA (L.M.), CARVALHO (M. da G.S.), ESPINOLA (M.M.B.), STEIGERWALT (A.G.), DOUGLAS (M.P.), BRENNER (D.J.) et FACKLAM (R.R.) : Enterococcus porcinus sp. nov. and Enterococcus ratti sp. nov., associated with enteric disorders in animals. Int. J. Syst. Evol. Microbiol., 2001, 51, 1737-1743.
. TYRRELL (G.J.), TURNBULL (L.), TEIXEIRA (L.M.), LEFEBVRE (J.), CARVALHO (M.G.S.), FACKLAM (R.R.) et LOVGREN (M.) : Enterococcus gilvus sp. nov. and Enterococcus pallens sp. nov. isolated from human clinical specimens. J. Clin. Microbiol., 2002, 40, 1140-1145.
. VANCANNEYT (M.), SNAUWAERT (C.), CLEENWERCK (I.), BAELE (M.), DESCHEEMAEKER (P.), GOOSSENS (H.), POT (B.), VANDAMME (P.), SWINGS (J.), HAESEBROUCK (F.) et DEVRIESE (L.A.) : Enterococcus villorum sp. nov., an enteroadherent bacterium associated with diarrhoea in piglets. Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 2001, 51, 393-400.
. VANCANNEYT (M.), ZAMFIR (M.), DEVRIESE (L.A.), LEFEBVRE (K.), ENGELBEEN (K.), VANDEMEULEBROECKE (K.), AMAR (M.), DE VUYST (L.), HAESEBROUCK (F.) et SWINGS (J.) : Enterococcus saccharominimus sp. nov., from dairy products. Int. J. Syst. Evol. Microbiol., 2004, 54, 2175-2179.

 

1) Espèces pyrrolidonyl-arylamidase +, mannitol +, sorbitol +, sorbose +, ADH -

Espèces

Mobilité

Pigmentation

Tellurite*

Arabinose

Lactose

Raffinose

Ribose

Saccharose

E. avium

-

-

-

+

+

-

+

+

E. gilvus

-

+

-

-

+

+

+

+

E. malodoratus

-

-

-

-

d

+

+

+

E. pseudoavium

-

-

-

-

+

-

+

+

E. raffinosus

-

-

-

+

+

+

+

+

* : Croissance en présence de 0,04 p. cent de tellurite.

 

2) Espèces pyrrolidonyl-arylamidase +, mannitol +, sorbitol +, sorbose -, ADH +

Espèces

Mobilité

Pigmentation

Tellurite*

Arabinose

Lactose

Raffinose

Ribose

Saccharose

E. faecalis

-

-

+

-

+

-

+

+

* : Croissance en présence de 0,04 p. cent de tellurite.

 

3) Espèces pyrrolidonyl-arylamidase +, mannitol +, sorbitol d, sorbose -, ADH +

Espèces

Mobilité

Pigmentation

Tellurite*

Arabinose

Lactose

Raffinose

Ribose

Saccharose

E. casseliflavus

+

+

-

+

+

+

+

+

E. mundtii

-

+

-

+

+

+

+

+

* : Croissance en présence de 0,04 p. cent de tellurite. 
Note : Contrairement à E. mundtii, E. casseliflavus acidifie le méthyl-alpha-D-glucopyranoside.

 

4) Espèces pyrrolidonyl-arylamidase +, mannitol +, sorbitol -, sorbose -, ADH +

Espèces

Mobilité

Pigmentation

Tellurite*

Arabinose

Lactose

Raffinose

Ribose

Saccharose

E. faecium

-

-

-

+

+

-**

+

d

E. gallinarum

d

-

-

+

+

+

+

+

* : Croissance en présence de 0,04 p. cent de tellurite.
** : Quelques souches, isolées principalement chez les volailles, acidifient le raffinose.
Note : Contrairement à E. faecium, E. gallinarum acidifie le méthyl-alpha-D-glucopyranoside.

 

5) Espèces pyrrolidonyl-arylamidase +, mannitol -, sorbitol -, sorbose -, ADH +

Espèces

Mobilité

Pigmentation

Tellurite*

Arabinose

Lactose

Raffinose

Ribose

Saccharose

Xylose

E. dispar

-

-

-

-

-

+

-

+

-

E. durans

-

-

-

-

-

-

-

d

-

E. faecalis (variant asaccharolytique)

-

-

+

-

-

-

-

-

-

E. hirae

-

-

-

-

-

+

 

+

-

E. ratti**

-

-

-

-

d

-

+

-

-

E. villorum

-

-

 

-

+

-

+

-

d

* : Croissance en présence de 0,04 p. cent de tellurite.
** : Au moins une souche de E. ratti acidifie le mannitol.

Autres caractères permettant de différencier Enteroccus durans, Enterococcus hirae et Enterococcus villorum

Espèces

Bêta-
mannosidase

Méthyl-bêta-D-
glucopyranoside*

D-xylose

Coagulation du
lait écrémé

Tobramycine**

E. durans

d
(généralement +)

+

-

d
(généralement +)

S

E. hirae

d
(généralement +)

+

-

-

R

E. villorum

-

-

d
(généralement +)

-

S

* : Concentration de 0,05 p. cent (l'acidification du méthyl-bêta-D-glucopyranoside est généralement recherchée en utilisant une concentration de 1 p. cent).
** : La sensibilité à la tobramycine a été étudiée sur le milieu Isosensitest (Oxoid) en utilisant des tablettes Sensitab (Rosco).

 

 6) Espèces pyrrolidonyl-arylamidase +, mannitol -, sorbitol -, sorbose -, ADH -

Espèces

Mobilité

Pigmentation

Tellurite*

Arabinose

Lactose

Raffinose

Ribose

Saccharose

E. aquimarinus

*

-

 

+

+

+

-

+

E. asini

-

-

-

-

+

-

-

-

E. sulfureus

-

+

-

-

+

-

+

+

* : Croissance en présence de 0,04 p. cent de tellurite. 

 

7) Espèces pyrrolidonyl-arylamidase -, raffinose +, ADH -*

Espèces

Mobilité

Pigmentation

Arabinose

Lactose

Mannitol

Ribose

Sorbitol

Sorbose

E. cecorum

-

-

-

+

d**

+

d

-

E. columbae

-

-

+

d

+

+

-

-

E. pallens

-

+

+

+

+

+

+

+

E. saccharolyticus

-

-

-

-

+

+

+

+

* : ADH variable pour E. cecorum.
** : Mannitol - pour les souches d'origine aviaire et + pour les souches isolées des mammifères.

 

8) Enterococcus canintestini, Enterococcus canis, Enterococcus devriesei, Enterococcus haemoperoxidus, Enterococcus hermanniensis, Enterococcus italicus, Enterococcus moraviensis et Enterococcus phoeniculicola.
. Enterococcus camelliae est ADH -. Cette espèce n'acidifie pas le galactose, le lactose, le raffinose, le ribose ou le sorbitol. La réponse au test pyrrolidonyl-arylamidase n'est pas indiquée dans la publication décrivant cette espèce.
. Enterococcus devriesei donne une réponse variable au tests pyrrolidonyl arylmamidase et sorbitol, il est ADH-, mannitol+, sorbose+ (réaction parfois faiblement positive).
. Enterococcus canintestini donne une réponse variable au test pyrrolidonyl arylmamidase. C'est une espèce ADH+, mannitol-, sorbitol-, sorbose-.
. Enterococcus canis et Enterococcus hermanniensis sont des espèces pyrrolidonyl-arylamidase +, mannitol +, sorbitol -, sorbose -, ADH -.
. Enterococcus haemoperoxidus est une espèce pyrrolidonyl-arylamidase +, mannitol variable, sorbitol -, sorbose -, ADH +. Toutes les souches actuellement décrites (juillet 2001) donnent une réponse positive au test catalase lorsque la culture est effectuée sur une gélose au sang.
. Enterococcus italicus est pyrrolidonyl-arylamidase +, mannitol variable, sorbitol variable, sorbitol - et ADH -.
. Enterococcus moraviensis est une espèce pyrrolidonyl-arylamidase variable, mannitol +, sorbitol -, généralement sorbose -, ADH -.
. Enterococcus phoeniculicola acidifie en 48 heures (réaction négative en 24 heures), le lactose, le mannitol, le sorbitol et le sorbose. La réponse au test pyrrolidonyl-arylamidase n'est pas indiquée dans la publication décrivant cette espèce.

 

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