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Dernière mise à jour le 21 novembre 2007
Quelques caractères bactériologiques permettant de différencier quelques mycobactéries
du "complexe Mycobacterium chelonae" et du "complexe Mycobacterium fortuitum"
D'après :
. KUSUNOKI (S.) et EZAKI (T.) : Proposal of Mycobacterium peregrinum sp. nov., nom. rev., and elevation of Mycobacterium chelonae subsp. abscessus (Kubica et al.) to species status: Mycobacterium abscessus comb. nov. Int. J. Syst. Bacteriol., 1992, 42, 240-245.
. SCHINSKY (M.F.), MOREY (R.E.), STEIGERWALT (A.G.), DOUGLAS (M.P.), WILSON (R.W.), FLOYD (M.M.), BUTLER (W.R.), DANESHVAR (M.I.), BROWN-ELLIOTT (B.A.), WALLACE Jr. (R.J.), McNEIL (M.M.), BRENNER (D.J.) et BROWN (J.M.) : Taxonomic variation in the Mycobacterium fortuitum third biovariant complex: description of Mycobacterium boenickei sp. nov., Mycobacterium houstonense sp. nov., Mycobacterium neworleansense sp. nov. and Mycobacterium brisbanense sp. nov. and recognition of Mycobacterium porcinum from human clinical isolates. Int. J. Syst. Evol. Microbiol., 2004, 54, 1653-1667.
. SPRINGER (B.), BÖTTGER (E.C.), KIRSCHNER (P.) et WALLACE Jr. (R.J.) : Phylogeny of the Mycobacterium chelonae-like organism based on partial sequencing of the 16S rRNA gene and proposal of Mycobacterium mucogenicum sp. nov. Int. J. Syst. Bacteriol., 1995, 45, 262-267.
. WILSON (R.W.), STEINGRUBE (V.A.), BÖTTGER (E.C.), SPRINGER (B.), BROWN-ELLIOTT (B.A.), VINCENT (V.), JOST Jr. (K.C.), ZHANG (Y.), GARCIA (M.J.), CHIU (S.H.), ONYI (G.O.), ROSSMOORE (H.), NASH (D.R.) et WALLACE Jr. (R.J.) : Mycobacterium immunogenum sp. nov., a novel species related to Mycobacterium abscessus and associated with clinical disease, pseudo-outbreaks and contaminated metalworking fluids: an international cooperative study on mycobacterial taxonomy. Int. J. Syst. Evol. Microbiol., 2001, 51, 1751-1764.
. WHIPPS (C.M.), BUTLER (W.R.), POURAHMAD (F.), WATRAL (V.G.) et KENT (M.L.) : Molecular systematics support the revival of Mycobacterium salmoniphilum (ex Ross 1960) sp. nov., nom. rev., a species closely related to Mycobacterium chelonae. Int. J. Syst. Evol. Microbiol., 2007, 57, 2525-2531.
N.B. : Toutes les souches cultivent en moins de sept jours et donnent des colonies non pigmentées.
1) M. abscessus ; 2) M. chelonae ; 3) M. fortuitum subsp. fortuitum ; 4) M. fortuitum subsp. acetamidolyticum ; 5) M. fortuitum biovariant trois ; 6) M. immunogenum ; 7) M. mucogenicum ; 8) M. peregrinum ; 9) M. salmoniphilum
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Croissance à 37 °C
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Arylsulfatase (3 jours)
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Réduction des nitrates
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Brunissement des colonies en présence de citrate ferrique ammoniacal
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Citrate***
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D-glucitol***
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Inositol***
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Mannitol***
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NaCl****
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Catalase semi-quantitative*****
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d
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+ : 90 p. cent des souches ou plus donnent un résultat positif.
- : 90 p. cent des souches ou plus donnent un résultat négatif.
d : 11 à 89 p. cent des souches donnent un résultat positif.
* : Contrairement à Mycobacterium fortuitum subsp. fortuitum, Mycobacterium fortuitum subsp. acetamidolyticum ne cultive pas sur une gélose de MacConkey sans cristal violet, ne cultive pas à 35 °C en présence de 5 p. cent de NaCl, n'acidifie ni le mannose ni le glucose et n'assimile pas le glucose. De plus, cette sous-espèce n'utilise pas le glutamate comme source d'azote et de carbone mais, en revanche, elle utilise l'acétamide.
** : Les souches du biovariant trois de Mycobacterium fortuitum ont été récemment réparties dans quatre nouvelles espèces : Mycobacterium boenickei, Mycobacterium brisbanense, Mycobacterium houstonense et Mycobacterium neworleanense.
Mycobacterium brisbanense et Mycobacterium houstonense cultivent à 42 °C et ils acidifient le D-sorbitol. Mycobacterium brisbanense possède une catalase thermostable et il acidifie l'adonitol, le L-arabinose, l'érythritol, le L-rhamnose et la salicine. Des résultats inverses sont obtenus avec Mycobacterium houstonense.
Mycobacterium boenickei et Mycobacterium neworleanense ne cultivent pas à 42 °C et ils n'acidifient pas le D-sorbitol. Contrairement à Mycobacterium boenickei, Mycobacterium neworleanense acidifie l'érythritol et le D-xylose.
*** : Assimilation.
**** : Le test de tolérance au NaCl doit être réalisé sur la pente d'un milieu de Löwenstein-Jensen incubé à 35 °C dans une atmosphère normale (non enrichie en dioxyde de carbone) et ensemencé avec 0,1 mL d'une suspension d'opacité 1 de l'échelle de McFarland. Un résultat est considéré comme positif si, après 4 semaines d'incubation, plus de 50 colonies quelle que soit leur taille, sont visibles.
***** : Formation de bulles sur une hauteur supérieure à 45 mm.
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