STREPTOCOCCUS DENTAPRI

Trente huit souches de streptocoques, provenant de la flore buccale de huit sangliers en bonne santé, ont été isolées sur un milieu MSA (Mitis Salivarius Agar)*, supplémenté ou non en bacitracine (2 U mL^-1). Quatre de ces souches ont été choisies au hasard pour faire l'objet d'une analyse plus complète.

L'étude des séquences des ARNr 16S révèle une parenté avec ¤ Streptococcus equi subsp. equi, ¤ Streptococcus equi subsp. zooepidemicus, ¤ Streptococcus orisuis, ¤ Streptococcus ferus, Streptococcus ratti et Streptococcus macacae. Le pourcentage d'homologie le plus élevé, 94,7, est obtenu avec la souche type de ¤ Streptococcus equi subsp. equi. Toutefois, les homologies ADN-ADN obtenues avec la souche NUM 1529 (qui sera désignée comme la souche type de Streptococcus dentapri) et la souche type de Streptococcus equi subsp. equi sont inférieures à 10 p. cent. Ces résultats permettent de décrire une nouvelle espèce, apparentée à plusieurs espèces du "groupe Streptococcus mutans" ou du "sous-ensemble or5" (or pour streptocoques oraux).

Les espèces du "groupe de Streptococcus mutans" (Streptococcus criceti, ¤ Streptococcus devriesei, ¤ Streptococcus dentirousetti, Streptococcus downei, ¤ Streptococcus ferus, Streptococcus macacae, Streptococcus mutans, ¤ Streptococcus orisratti, ¤ Streptococcus orisuis, Streptococcus ratti et Streptococcus sobrinus) sont isolées de la cavité buccale et elles sont généralement associées à la plaque dentaire. À partir du saccharose, elles produisent des polyosides extracellulaires formant une matrice polysaccharidique dont le rôle est très important car elle sert de support pour d'autres bactéries et de réserve énergétique.

Les caractères phénotypiques permettent de distinguer les souches isolées de la cavité buccale des sangliers des autres espèce du genre Streptococcus ce qui permet à Takada et al. de valider la nomenclature de Streptococcus dentapri.

Les souches de Streptococcus dentapri sont constituées de coques à Gram positif, non sporulés, immobiles, se présentant groupés par deux ou assemblés en courtes chaînes, aéro-anaérobies, catalase négative, non hémolytiques sur gélose au sang de cheval, résistants à la bacitracine (2 U mL^-1) et dépourvus des antigènes des groupes A, B, C, D, F ou G de Lancefield.

Les caractères phénotypiques ont été étudiés à l'aide de galeries Rapid ID32 Strep, API 50 CH et API ZYM.
. Une réponse positive est obtenue pour les tests VP, alanine-phénylalanine-proline arylamidase, cystine arylamidase, leucine arylamidase, valine arylamidase, alpha-glucosidase, bêta-glucosidase, phosphatase acide, phosphatase alcaline, naphthol-AS-BI-phosphohydrolase, acidification de l'amygdaline, de l'arbutine, du cellobiose, de l'esculine, du fructose, de la N-acétylglucosamine, du glucose, du maltose, du D-mannose, du D-mannitol, du saccharose, de la salicine, du D-sorbitol et du tréhalose.
. Une réponse négative est notée pour les tests arginine di-hydrolase, alpha-galactosidase, bêta-galactosidase, N-acétyl-bêta-glucosaminidase, hydrolyse de l'hippurate, acidification du galactose, du lactose, du mélibiose, du raffinose, du D-ribose et du tagatose.

Les colonies obtenues après incubation à 37 °C sur une gélose au sang de cheval sont blanches, non hémolytiques et leur diamètre est compris entre 0,75 et 1 mm.
Sur milieu MSA, les colonies sont petites, ridées, adhérentes à la gélose, à contour irrégulier et de couleur bleue foncée.

Quelques caractères permettant de différencier Streptococcus dentapri des autres streptocoques du groupe de Streptococcus mutans sont donnés dans le tableau I.

Les principaux caractères permettant de Streptococcus dentapri des espèces phylogénétiquement proches figurent dans le tableau ci-dessous (d'après Takada et al. 2010).

	S. dentapri	S. equi subsp. equi	S. equi subsp. zooepidemicus	S. ferus	S macacae	S. orisuis	S. ratti
Antigène de Lancefield	-	C	C	-	-	-	-
ADH	–	+	+	–	–	–	+
VP	+	–	–	+	+	+	+
Hydrolyse de l'esculine	+	–	–	–	–	+	+
Acidification du lactose	–	–	+	+	+	+	+
Acidification du mannitol	+	–	–	+	+	+	+
Acidification du mélibiose	–	–	–	–	–	+	+
Acidification du raffinose	–	–	–	–	+	+	+
Acidification du sorbitol	+	–	+	+	+	+	+
Acidification du tréhalose	+	–	–	+	+	+	+

Le sanglier est un animal omnivore susceptible d'ingérer du saccharose, mais aucun pouvoir cariogène pour cette espèce animale n'est mentionné dans la publication de Takada et al.

BOUVET (A.), DELMAS (P.) et FRENEY (J.) : Streptococcaceae : Streptococcus, Enterococcus, Lactococcus. In : J. FRENEY, F. RENAUD, W. HANSEN et C. BOLLET : Manuel de bactériologie clinique, volume 2, 2ème édition, Elsevier, collection Option Bio, Paris, 1994, 99. 705-740.

SAUVÊTRE (E.) : Bactériologie de la carie dentaire et des maladies du parodonte, de l'endodonte et du périapex. In : J. FRENEY, F. RENAUD, W. HANSEN et C. BOLLET : Manuel de bactériologie clinique, volume 2, 2ème édition, Elsevier, collection Option Bio, Paris, 1994, 99. 643-664.

SCHLEGEL (L.) et BOUVET (A.) : Streptocoques et genres apparentés : abiotrophes et entérocoques. Bull. Soc. Fr. Microbiol., 1998, 13 HS, 7-17.

TAKADA (K.), HAYASHI (K.), SATO (Y.) et HIRASAWA (M.) : Streptococcus dentapri sp. nov., isolated from the wild boar oral cavity. Int. J. Syst. Evol. Microbiol., 2010, 60, 820-823.

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Saccharose : 50,0 g
Agar : 15,0 g
Digestion enzymatique de protéines : 10,0 g
Protéose peptone : 10,0 g
K₂HPO₄ : 4,0 g
D-glucose : 1,0 g
Bleu trypan : 0,08 g
Cristal violet : 0,8 mg
Solution de Na₂TeO₃ (dissoudre 0,1 g de Na₂TeO₃ dans 10 mL d'eau distillée) : 1,0 mL

J.P. Euzéby : Dictionnaire de Bactériologie Vétérinaire