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Créé le 19 octobre 1999
STAPHYLOCOCCUS FELIS
Systématique
En 1989, Igimi et al. proposent la nomenclature de Staphylococcus felis pour 39 souches de staphylocoques isolées du chien et du chat. Les études d'hybridation ADN - ADN effectuées sur 6 de ces souches montrent qu'elles forment une genomospecies avec un pourcentage d'homologie supérieur à 80 p. cent (pour la définition d'une genomospecies voir le fichier Définitions d'une genomospecies et d'une espèce bactérienne). Ces souches sont phénotypiquement proches de Staphylococcus simulans mais les résultats des études d'homologie ADN - ADN, effectuées entre les souches types des 27 espèces ou sous-espèces alors identifiées* et la souche GD521 (la souche type de Staphylococcus felis) révèlent un pourcentage d'homologie ne dépassant pas 9 p. cent.
Caractères bactériologiques
Les souches de Staphylococcus felis sont constituées de coques à Gram positif, de 0,8 à 1,2 µm de diamètre, souvent groupés en amas irréguliers, immobiles, non sporulés, aéro-anaérobies, catalase positive, oxydase négative, sensibles à 1,6 µg/mL de novobiocine, à 2 U/mL de bacitracine et à 200 µg/mL de lysostaphine.
Les principaux caractères biochimiques sont les suivants :
Sur gélose P, la culture est obtenue en 24 heures en présence de 10 p. cent de NaCl et en 72 heures en présence de 15 p. cent de NaCl. La croissance est faible à 15 ou à 45 °C. Les colonies sont circulaires, à contour régulier, légèrement convexes, opaques et leur diamètre est de 5 à 8 mm. Sur gélose au sang de mouton, les colonies ne présentent pas une zone d'hémolyse bêta mais la plupart des souches sont faiblement hémolytiques. Le tableau I donne quelques caractères permettant de différencier Staphylococcus felis des espèces du genre Staphylococcus, sensibles à la novobiocine, coagulase négative (ou pouvant être coagulase négative), oxydase négative et isolées des animaux.
Habitat et pouvoir pathogène
Staphylococcus felis peut être isolé chez le chien et chez le chat. Chez le chat, cette espèce est un représentant de la flore cutanée et de la flore orale au sein desquelles elle constitue l'espèce du genre Staphylococcus la plus abondante. Staphylococcus felis semble également être présent au sein de la flore oculaire.
Diagnostic bactériologique
Le diagnostic bactériologique est délicat car Staphylococcus felis est phénotypiquement très proche de Staphylococcus simulans. Aussi, il est probable que dans les publications antérieures à 1989, certaines souches isolées du chat et baptisées Staphylococcus simulans soient en fait des souches de Staphylococcus felis. Aucun critère ne permet de différencier de façon certaine ces deux taxons. Les principaux caractères permettant d'orienter le diagnostic sont la sensibilité à la bacitracine, la fermentation du mannose et la recherche de la phosphatase.
Le tableau I donne quelques caractères permettant de différencier Staphylococcus felis des espèces du genre Staphylococcus, sensibles à la novobiocine, coagulase négative (ou pouvant être coagulase négative), oxydase négative et isolées des animaux. L'analyse des amplicons obtenus par amplification de l'espace intergénique 16S-23S suivie d'un clivage par l'enzyme de restriction DraI est, selon Mendoza et al. (1998), une méthode rapide, facile à mettre en œuvre et permettant de caractériser Staphylococcus felis.
Sensibilité aux antibiotiques
Les travaux de Igimi et al. montraient que Staphylococcus felis était sensible à la pénicilline G, à l’ampicilline, à l’érythromycine, au chloramphénicol et, le plus souvent, à l’oxytétracycline. Plus récemment, des études réalisées au Brésil montrent que plus de 48 p. cent des souches isolées de la peau de chats sains résistent au moins à un antibiotique et ce pourcentage atteint plus de 60 p. cent pour les souches isolées de la bouche. Des résistances sont notées vis-à-vis de la pénicilline G, de l'oxacilline, de l'ampicilline, de la céfalexine, de la rifampicine, de la gentamicine, de la tétracycline et de l'enrofloxacine. Un pourcentage non négligeable de souches (5 souches sur 37 dans l'étude publiée en 1998 par Lilenbaum et al.) résiste même à la méthicilline.
Orientation bibliographique
COX (H.U.), HOSKINS (J.D.), NEWMAN (S.S.), TURNWALD (G.H.), FOIL (C.S.), ROY (A.F.) et KEARNEY (M.T.) : Distribution of staphylococcal species on clinically healthy cats. Am. J. Vet. Res., 1985, 46, 1824-1828. ESPÍNOLA (M.B.) et LILENBAUM (W.) : Prevalence of bacteria in the conjonctival sac and on the eyelid margin of clinically normal cats. J. Small Anim. Pract., 1996, 37, 364-366. HIGGINS (R.) et GOTTSCHALK (M.) : Isolation of Staphylococcus felis from case of external otitis in cats. Can. Vet. J., 1991, 32, 312. IGIMI (S.), ATOBE (H.), TOHYA (Y.), INOUE (A.), TAKAHASHI (E.) et KONISHI (S.) : Characterization of the most frequently encountered Staphylococcus sp. in cats. Vet. Microbiol., 1994, 39, 255-260. IGIMI (S.), KAWAMURA (S.), TAKAHASHI (E.), and MITSUOKA (T.): Staphylococcus felis, a new species from clinical specimens from cats. Int. J. Syst. Bacteriol., 1989, 39, 373-377. LILENBAUM (W.), ESTEVES (A.L.) et SOUZA (G.N.) : Prevalence and antimicrobial susceptibility of staphylococci isolated from saliva of clinically normal cats. Lett. Appl. Microbiol., 1999, 28, 448-452. LILENBAUM (W.), NUNES (E.L.C.) et AZEREDO (M.A.I.) : Prevalence and antimicrobial susceptibility of staphylococci isolated from the skin surface of clinically normal cats. Lett. Appl. Microbiol., 1998, 27, 224-228. MENDOZA (M.), MEUGNIER (H.), BES (M.), ETIENNE (J.) et FRENEY (J.) : Identification of Staphylococcus species by 16S-23S rDNA intergenic spacer PCR analysis. Int. J. Syst. Bacteriol., 1998, 48, 1049-1055.
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* : Staphylococcus aureus subsp. aureus, ¤ Staphylococcus aureus subsp. anaerobius, ¤ Staphylococcus intermedius, ¤ Staphylococcus hyicus, ¤ Staphylococcus chromogenes, Staphylococcus epidermidis, Staphylococcus saprophyticus, Staphylococcus simulans, ¤ Staphylococcus sciuri, Staphylococcus lentus, Staphylococcus xylosus, Staphylococcus cohnii, Staphylococcus capitis, Staphylococcus hominis, Staphylococcus haemolyticus, Staphylococcus warneri, Staphylococcus carnosus, Staphylococcus caseolyticus, Staphylococcus auricularis, Staphylococcus gallinarum, Staphylococcus caprae, Staphylococcus saccharolyticus, Staphylococcus arlettae, ¤ Staphylococcus equorum, Staphylococcus klosii, Staphylococcus lugdunensis, Staphylococcus schleiferi.
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