J.P. Euzéby : Dictionnaire de Bactériologie Vétérinaire

Créé le 2 juin 1999
Dernière mise à jour le 22 août 2005

Principaux caractères permettant de différencier les espèces et sous-espèces du genre Staphylococcus
isolées en médecine vétérinaire et produisant ou pouvant produire une coagulase

D'après :
. BRUN (Y.) et BES (M.) : Staphylococcus. In : J. FRENEY, F. RENAUD, W. HANSEN et C. BOLLET : Précis de bactériologie clinique, Editions ESKA, Paris, 2000, pp. 783-834.
. DEVRIESE et HÁJEK : Identification of pathogenic staphylococci isolated from animals and foods derived from animals. J. Appl. Bacteriol., 1980, 49, 1-11.
. DEVRIESE (L.A.), VANCANNEYT (M.), BAELE (M.), VANEECHOUTTE (M.), DE GRAEF (E.), SNAUWAERT (C.), CLEENWERCK (I.), DAWYNDT (P.), SWINGS (J.), DECOSTERE (A.) et HAESEBROUCK (F.) : Staphylococcus pseudintermedius sp. nov., a coagulase-positive species from animals. Int. J. Syst. Evol. Microbiol., 2005, 55, 1569-1573.
. FOSTER (G.), ROSS (H.M.), HUTSON (R.A.) et COLLINS (M.D.) : Staphylococcus lutrae sp. nov., a new coagulase-positive species isolated from otters. Int. J. Syst. Bacteriol., 1997, 47, 724-726.
. FRENEY (J.), KLOOS (W.E.), HAJEK (V.), WEBSTER (J.A.), BES (M.), BRUN (Y.) et VERNOZY-ROZAND (C.) : Recommended minimal standards for description of new staphylococcal species. Int. J. Syst. Bacteriol., 1999, 49, 489-502.
. IGIMI (S.), TAKAHASHI (E.) et MITSUOKA (T.) : Staphylococcus schleiferi subsp. coagulans subsp. nov., isolated from the external auditory meatus of dogs with external ear otitis. Int. J. Syst. Bacteriol., 1990, 40, 409-411.
. KLOOS (W.E.) et BANNERMAN (T.L.) : Staphylococcus and Micrococcus. In : P.R. MURRAY, E.J. BARON, M.A. PFALLER, F.C. TENOVER et R.H. YOLKEN (éd.) : Manual of clinical microbiology, 7th edition, ASM Press, Washington, D.C., 1999, pp. 264-282.

1) S. aureus subsp. aureus ; 2) S. aureus subsp. anaerobius ; 3) S. delphini; 4) S. hyicus; 5) S. intermedius ; 6) S. lutrae ; 7) S. pseudintermedius ; 8) S. schleiferi subsp. coagulans.
	1	2	3	4	5	6	7	8
Coagulase*	+	+	+	d	+	+	+	+
Clumping factor	+	-	-	-	d	-	-	-
Croissance en aérobiose	+	- ou tardivement +	+	+	+	+	+	+
Croissance à 15 °C	+	-		+	+
Croissance à 45 °C	+	-	+	- ou faible et retardée	+	+
Diamètre des colonies > 5 mm**	+	-	+	+	+	-	+	d
Pigmentation possible des colonies	+	-	-	-	-	-	-	-
Réduction des nitrates	+	-	+	+	+	+	+	+
	1	2	3	4	5	6	7	8
1) S. aureus subsp. aureus ; 2) S. aureus subsp. anaerobius ; 3) S. delphini; 4) S. hyicus; 5) S. intermedius ; 6) S. lutrae ; 7) S. pseudintermedius ; 8) S. schleiferi subsp. coagulans.
	1	2	3	4	5	6	7	8
DNase thermostable	+	+	-	+	+	+	+	+
Hyaluronidase	+	+		+	-	-		-
Hémolyse (sang de mouton)	+	+	+	-	d	+	+	+
VP***	+	-	-	-	-	-	+	+
Bêta-galactosidase	-	-		-	+	+	+	d
Bêta-glucuronidase	-	-		d, très généralement +	-		-
Pyrrolidonyl arylamidase	-		-	-	+		+
	1	2	3	4	5	6	7	8
1) S. aureus subsp. aureus ; 2) S. aureus subsp. anaerobius ; 3) S. delphini; 4) S. hyicus; 5) S. intermedius ; 6) S. lutrae ; 7) S. pseudintermedius ; 8) S. schleiferi subsp. coagulans.
	1	2	3	4	5	6	7	8
D-galactose****	+	-		+	+	+	+	+
Maltose****	+	+	+	-	- ou faiblement +	+	+	-
D-mannitol****	+	-	+ faible	-	d	+	lent et faiblement +	d
Saccharose							+
D-tréhalose****	+	-	-	+	+	+	+	-
D-ribose****	+	-		+	+		+	+
D-xylose****	-	-	-	-	-	+*****	-	-
Résistance à 8 µg/mL d'acriflavine	+		-	-	-	-	-	-
Résistance à la polymyxine B	+		-	+	-	-	-	-
	1	2	3	4	5	6	7	8
1) S. aureus subsp. aureus ; 2) S. aureus subsp. anaerobius ; 3) S. delphini; 4) S. hyicus; 5) S. intermedius ; 6) S. lutrae ; 7) S. pseudintermedius ; 8) S. schleiferi subsp. coagulans.

* : Plasma de lapin (Difco).

** : Sur gélose P après 3 jours d'incubation à 37 °C.
Composition (en g/L) de la gélose P : agar : 15 ; peptone : 10 ; NaCl : 5 ; extraits de levure : 5 g ; glucose : 1 g.

*** : La technique dérive de celle de Davis et Hoyling. La souche à étudier est ensemencée sur une gélose cœur-cervelle contenant 1 p. cent de glucose. Après 24 heures d'incubation à 37 °C, on dépose sur la gélose un disque similaire à ceux utilisés pour les antibiogrammes et imprégné d'une solution à 10 p. cent de pyruvate de sodium. Après 3 heures d'incubation, on place sur le disque une goutte de potasse à 40 p. cent, une goutte d'une solution de créatinine à 1 p. cent et une goutte d'une solution alcoolique à 1 p. cent d'alpha-naphtol. L'apparition, dans un délai de 1 heure, d'une couleur rose ou rouge signe une réaction positive.

**** : Acidification en aérobiose.

***** : Selon Brun et Bes, le caractère d'acidification du xylose n'est pas retrouvé en utilisant une galerie API Staph.

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