J.P. Euzéby : Dictionnaire de Bactériologie Vétérinaire

Créé le 12 mars 2010

VIBRIO OWENSII

Voir aussi le fichier : ¤ "Vibrionales", Vibrionaceae, Vibrio.

Les espèces du genre Vibrio se répartissent en 14 groupes (voir le fichier ¤ "Vibrionales", Vibrionaceae, Vibrio). Le groupe Harveyi est constitué des espèces Vibrio alginolyticus, Vibrio azureus, Vibrio campbellii, Vibrio harveyi, Vibrio mytili, Vibrio natriegens, Vibrio parahaemolyticus et Vibrio rotiferianus.
En 2010, Cano-Gómez et al. décrivent une neuvième espèce du groupe Harveyi, Vibrio owensii, dont la nomenclature a été validement publiée en mars 2010 par inscription sur la liste de validation 132.

L'étude des séquences des ARNr 16S permet de classer, au sein du groupe Harveyi, deux souches isolées de crustacés (les souches DY05 et 47666-1). Une analyse de séquences multilocus (Multilocus Sequence Analysis, MLSA), portant sur les gènes rpoA, pyrH, topA, ftsZ et merB, montre que les deux souches forment un groupe distinct des autres espèces du groupe Harveyi.
Les hybridations ADN-ADN révèlent (i) que les deux souches appartiennent à une même genomospecies (pourcentage d'hybridation de 76) et (ii) que cette genomospecies est distincte des autres espèces du groupe Harveyi (les pourcentages d'hybridation obtenus avec les souches types des autres espèces n'excèdent pas 55).
La souche CAIM 994, initialement identifiée comme une souche de ¤ Vibrio rotiferianus, semble appartenir à l'espèce Vibrio owensii.

Les souches de Vibrio owensii sont constituées de bacilles à Gram négatif, légèrement incurvés, de 3,1 µm de longueur sur 1,0 µm de diamètre, mobiles, aéro-anaérobies et résistants au O/129 (150 µg). La majorité des caractères phénotypiques a été étudiée à l'aide de galeries API 20E, API 20NE et API ZYM.
. Une réponse positive est obtenue pour les tests oxydase, réduction des nitrates, LDC, ODC, TDA, gélatinase, hydrolyse de l'esculine, assimilation du gluconate, du glucose, du malate, du mannose et du mannitol, acidification de l'amygdaline, du glucose, du mannitol et du saccharose.
. Une réponse négative est notée pour les tests ADH, utilisation du citrate, production d'hydrogène sulfuré, uréase, VP, assimilation de l'arabinose, acidification de l'arabinose, de l'inositol, du mélibiose, du rhamnose et du sorbitol.
. La réponse au test ONPG est variable selon les souches.
. En utilisant une galerie API ZYM, une réponse positive est observée avec les tests alpha-chymotrypsine, estérase (C4), estérase lipase (C8), leucine arylamidase, naphthol-AS-BI-phosphohydrolase, phosphatase alcaline et phosphatase acide.

Aucune culture n'est obtenue en l'absence de NaCl, en présence de 10 p. cent de NaCl ou après une incubation à 4 °C. La croissance est observée pour des concentrations en NaCl comprises entre 1 et 8 p. cent, et pour des températures allant de 12 à 37 °C.
Après 48 heures d'incubation à 28 °C, les colonies obtenues sur une gélose Marine Agar sont rondes (diamètre de 2 à 3 mm), lisses, opaques ou translucides, non luminescentes et elles n'envahissent pas le milieu.
Sur une gélose TCBS* incubée dans les mêmes conditions, les colonies sont rondes, brillantes, jaunes et leur diamètre est compris entre 2 et 3 mm.

Quelques caractères permettant de différentier Vibrio owensii des autres espèces du groupe Harveyi sont donnés dans le tableau ci-dessous.

  * : Croissance. ** : Assimilation. *** : Acidification. + : Réaction positive. - : Réaction négative. d : Réponse variable selon les souches. f : Réponse faiblement positive.

Les deux souches étudiées (souches DY05 et 47666-1) sont sensibles au chloramphénicol (30 µg), à la gentamicine (10 µg), à l'association triméthoprime/sulfaméthoxazole (1,25/23,75 µg) et à la tétracycline (30 µg). Elles résistent à l'ampicilline (10 µg) et leur sensibilité est intermédiaire vis-à-vis de l'érythromycine (15 µg) et de la kanamycine (30 µg).

La souche 47666-1 de Vibrio owensii a été isolée de larves de crevettes géantes tigrées (Penaeus monodon) élevées dans le Nord du Queensland et la souche DY05 provient de larves de langoustes ornées (Panulirus ornatus) également élevées au Queensland. Les animaux de ces élevages présentaient des signes cliniques et les souches se sont révélées pathogènes pour des larves de crevettes ou de langoustes.

La souche CAIM 994 a été isolée, en 2004, des reins d'un vivaneau rose (Lutjanus guttatus).

Orientation bibliographique

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* Gélose TCBS : Thiosulfate Citrate Bile salt Sucrose

Extraits de levure : 0,5 p. cent (poids/volume)
Peptone : 1,0 p. cent (poids/volume)
Thiosulfate de sodium : 1,0 p. cent (poids/volume)
Citrate de sodium : 1,0 p. cent (poids/volume)
Bile de bœuf : 0,8 p. cent (poids/volume)
Saccharose : 2,0 p. cent (poids/volume)
NaCl : 1,0 p. cent (poids/volume)
Citrate de fer : : 0,1 p. cent (poids/volume)
Bleu de bromothymol : 0,004 p. cent (poids/volume)
Bleu de thymol : 0,004 p. cent (poids/volume)
Agar : 1,4 p. cent (poids/volume)
pH : 8,6

Porter à ébullition pour dissoudre les ingrédients. Ne pas autoclaver.

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