J.P. Euzéby : Dictionnaire de Bactériologie Vétérinaire

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Créé le 18 mars 2003

 

ACTINOMYCES VACCIMAXILLAE

 

Le genre Actinomyces regroupe des bactéries à Gram positif dont le G + C p. cent est compris entre 55 et 71, non acido-résistantes, non sporulées, immobiles, aéro-anaérobies ou anaérobies et métabolisant le glucose en produisant de l'acide acétique, de l'acide lactique et de l'acide succinique.
Ce genre, tel qu'il est répertorié dans les Approved Lists of Bacterial Names, comprenait six espèces. Depuis le 1er janvier 1980, de nouvelles espèces ont été validement publiées et, compte tenu du transfert de Actinomyces bernardiae, de Actinomyces pyogenes et de Actinomyces suis dans le genre ¤ Arcanobacterium ainsi que du transfert de Actinomyces humiferus dans le genre Cellulomonas, le genre Actinomyces rassemblait 29 espèces à la date du 13 mars 2003 (voir le fichier Actinomyces in List of Procaryotic Names with Standing in Nomenclature). La plupart des espèces nouvellement décrites ont été isolées de prélèvements effectués chez l'homme ou chez l'animal et certaines d'entre elles semblent être des pathogènes opportunistes. Comme le soulignent Hall et al. (1999, 2001), l'identification des Actinomyces sp. est difficile et de nouvelles espèces restent encore à décrire. D'ailleurs, le 14 mars 2003, Hall et al. valident une nouvelle espèce, Actinomyces vaccimaxillae.

La description de Actinomyces vaccimaxillae repose sur une unique souche, la souche R10176 (= CCUG 46091 = CIP 107423), isolée d'une lésion suppurée de la mâchoire d'un bovin adulte du Pays de Galle. La proposition d'une nouvelle espèce, sur la base d'une seule souche, ne semble pas toujours très judicieuse mais elle n'est pas prohibée par le Code International de Nomenclature des Bactéries.

La souche R10176 est constituée de bacilles présentant des caractères phénotypiques compatibles avec ceux des Actinomyces sp. et l'analyse de la séquence des ARNr 16S confirme son appartenance au genre Actinomyces. Toutefois, il existe plus de 5 p. cent de divergence entre la séquence de la souche R10176 et les séquences des ARNr 16S des espèces phylogénétiquement les plus proches (voir tableau I). Aussi, conformément aux conclusions de Stackebrandt et Goebel, Hall et al. proposent de créer une nouvelle espèce pour la souche R10176.

Actinomyces vaccimaxillae se présente sous la forme de cocco-bacilles ou de petits bacilles de forme irrégulière (morphologie corynéforme), à Gram positif, non acido-résistants, non sporulés, immobiles, aéro-anaérobies, catalase négative, fermentant le glucose en produisant de l'acide lactique, de l'acide succinique et de petites quantités d'acide acétique.

Les caractères biochimiques ont été étudiés selon des méthodes traditionnelles et à l'aide de galeries API Rapid ID32Strep, API Rapid 32A, API Coryne et API ZYM.
. En utilisant des techniques conventionnelles, Actinomyces vaccimaxillae hydrolyse l'esculine et acidifie le L-arabinose, le fructose, le glucose, le D-ribose, le saccharose, la salicine, le tréhalose et le D-xylose. Une réponse négative est obtenue pour les tests réduction des nitrates, hydrolyse de la gélatine, hydrolyse de l'amidon, uréase, lécithinase, lipase, indole, acidification du cellobiose, du lactose, du mannitol et du D-raffinose.
. Les résultats obtenus avec les galeries API Rapid ID32Strep, API Rapid 32A, API Coryne et API ZYM peuvent être variables pour un même caractère. Par exemple, le test phosphatase alcaline est positif avec une galerie API Coryne mais négatif avec les autres systèmes. De même, en utilisant une galerie API Coryne, Actinomyces vaccimaxillae acidifie le lactose et n'acidifie pas le saccharose alors que des résultats inverses sont obtenus avec une galerie API Rapid ID32Strep. Des résultats contradictoires, en fonction du système API utilisé, ont été déjà observés avec d'autres Actinomyces sp. comme ¤ Actinomyces suimastitidis et Actinomyces funkei.
. Les galeries API Coryne sont certainement les plus utilisées en médecine vétérinaire pour l'étude des Actinomyces sp. En utilisant ce système, une réponse positive est notée pour les caractères hydrolyse de l'esculine, phosphatase alcaline, alpha-glucosidase, pyrazinamidase, acidification du glucose, du glycogène, du lactose, du mannitol, du ribose et du D-xylose. La réponse est négative pour les autres tests (réduction des nitrates, pyrrolidonyl arylamidase, bêta-glucuronidase, bêta-galactosidase, N-acétyl-bêta-glucosaminidase, uréase, hydrolyse de la gélatine, acidification du maltose et du saccharose).
. D'autres résultats, obtenus avec des galeries API Rapid ID32Strep, sont notés dans le tableau I qui présente les caractères permettant de différencier Actinomyces vaccimaxillae des espèces phylogénétiquement apparentées.

Après 48 heures d'incubation en anaérobiose (température d'incubation non précisée), les colonies, obtenues sur le milieu "Fastidous Anaerobe Agar"* au sang de cheval, sont convexes, lisses, à contour régulier, blanches, non hémolytiques et leur diamètre est inférieur à 1 mm.
La croissance obtenue en aérobiose ou dans une atmosphère enrichie de 10 p. cent de dioxyde de carbone est qualifiée de faible par Hall et al.

L'habitat de Actinomyces vaccimaxillae est inconnu et il en va de même pour son pouvoir pathogène. L'unique souche de cette espèce a été isolée d'un pus mais les auteurs ne donnent aucune précision sur la présence d'une éventuelle flore associée.

 

Orientation bibliographique

 

CHRISTENSEN (H.), BISGAARD (M.), FREDERIKSEN (W.), MUTTERS (R.), KUHNERT (P.) et OLSEN (J.E.) : Is characterization of a single isolate sufficient for valid publication of a new genus or species? Proposal to modify Recommendation 30b of the Bacteriological Code (1990 Revision). Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 2001, 51, 2221-2225.

HALL (V.), COLLINS (M.D.), HUTSON (R.), INGANÄS (E.), FALSEN (E.) et DUERDEN (B.I.) : Actinomyces vaccimaxillae sp. nov., from the jaw of a cow. Int. J. Syst. Evol. Microbiol., 2003, 53, 603-606.

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LAWSON (P.A.), NIKOLAITCHOUK (N.), FALSEN (E.), WESTLING (K.) et COLLINS (M.D.) : Actinomyces funkei sp. nov., isolated from human clinical specimens. Int. J. Syst. Evol. Microbiol., 2001, 51, 853-855.

ROSSELLÓ-MORA (R.) et AMANN (R.) : Review. The species concept for prokaryotes. FEMS Microbiol. Rev., 2001, 25, 39-67.

STACKEBRANDT (E.), FREDERIKSEN (W.), GARRITY (G.M.), GRIMONT (P.A.D.), KÄMPFER (P.), MAIDEN (M.C.J.), NESME (X.), ROSSELLO-MORA (R.), SWINGS (J.), TRÜPER (H.G.), VAUTERIN (L.), WARD (A.C.) et WHITMAN (W.B.) : Report of the ad hoc committee for the re-evaluation of the species definition in bacteriology. Int. J. Syst. Evol. Microbiol., 2002, 52, 1043-1047.

STACKEBRANDT (E.) et GOEBEL (B.M.) : Taxonomic note: A place for DNA-DNA reassociation and 16S rRNA sequence analysis in the present species definition in bacteriology. Int. J. Syst. Bacteriol., 1994, 44, 846-849.

 

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* Fastidious Anaerobe Agar (composition pour 1 litre de milieu)

Peptone : 23,0 g
Agar : 12,0 g
NaCl : 5,0 g
Glucose : 1,0 g
L-arginine : 1,0 g
Pyruvate de sodium : 1,0 g
Amidon soluble : 1,0 g
Chlorydrate de cystéine : 0,5 g
Succinate de sodium : 0,5 g
NaHCO3 : 0,4 g
Na4P2O7.10 H2O : 0,25 g
Sang de cheval ou de mouton : 50,0 mL
Solution d'hémine (1 g d'hémine + 20,0 mL de NaOH 1N + 80 mL d'eau distillée) : 1,0 mL
Solution de vitamine K1 (1 g de vitamine K1 + 99,0 mL d'éthanol absolu) : 0,1 mL

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